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细菌性痢疾、阿米巴痢疾诊断标准及处理原则——附录A

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  实验室诊断方法

  A1 镜检

  A1.1 粪便常规检查

  A1.1.1 粪便性状

  急性菌痢粪便量极少,为粘稠的脓血便和粘液便,无粪质;有时为稀便,水样便。

  A1.1.2 镜检

  A1.1.2.1 加生理盐水1~2滴于洁净玻片上,用牙签选择粪便不正常部分及不同部位,直接涂片。

  A1.1.2.2 涂布面积不少于玻片大小的2/3,厚薄均匀。

  A1.1.2.3 先用低倍镜观察,然后换高倍镜检查,急性菌痢粪便中,可见大量白细胞(或称脓细胞),一般平均每高倍镜视野≥15个,并可见红细胞。

  A2 病原学诊断方法

  A2.1 标本的收集

  A2.1.1 患者粪便标本的收集

  可采用便盒留便、肛拭或采便管采便。

  便盒留便:留取粪便时应采集新鲜粪便的脓血部分、粘液部分、水样便或稀便。便量1~5g。

  集体腹泻或食源性暴发患者粪便采集的数额,应根据患者人数的多少,决定采取标本的数量。

  A2.1.2 当怀疑患者为菌血症时,应以无菌操作,从静脉血管采取10~15mL血液,放入加有EDTA抗凝剂瓶中送检。

  所采取的粪便标本应尽快送检,不得超过2h送到化验室,否则标本应放入Cary-Blair运送培养基中,运送时间超过2h者,应在冰浴条件下送检。

  A2.2 分离方法

  A2.2.1 用接种环多点沾取标本病变部分,直接划线分离于SS、EMB(或HE、麦康凯)琼脂平板。37℃培养24h。

  A2.2.2 血液培养

  将采取的抗凝血液标本,放入葡萄糖肉汤,37℃培养,逐日观察结果。一般1~3d内阳性较高。

  为提高阳性检出率,可以在标本中加入0.5mL OP乳化剂(聚乙二醇辛基苯基醚),使血球溶解,以提高阳性检出率。

  A2.2.3 挑选可疑菌落

  从37℃培养16~24h的分离培养基上,观察挑选可疑菌落,其形态为无色,半透明,圆形,湿润、光滑、突起,大小为1~2mm;挑选可疑菌落,接种TSI和葡萄糖半固体或综合培养基,先划线后穿刺,做好标记,放37℃培养16h以上,观察结果。

  A2.2.4 初步生化反应

  志贺菌属在TSI上的生化反应为:斜面红色,底层产酸黄色,不产气。在葡萄糖半固体管内产酸为黄色,不产气,无动力。在综合培养基上为:斜面红色中立段产酸黄色,底层绿色,无动力。福氏志贺菌6型在上述三种培养基中,有时可产生少量气体。

  A2.3 生化学鉴定

  A2.3.1 凡属志贺氏菌属的培养物,应符合生化特性。

  A2.3.2 志贺菌属分为四个生化群。血清学分型与生化反应不一致者,均为非志贺菌。

  A2.3.3 生化反应或血清学反应可疑的培养物,均应做革兰氏染色镜检,并加做V.P、苯丙氨酸、西蒙氏柠檬酸盐、赖氨酸和葡萄糖铵试验,与有关的细菌相鉴别。

  A3 阿米巴痢疾病原学诊断方法

  A3.1 直接涂片法

  A3.1.1 取洁净载物玻片一张,在其中央滴生理盐水1~2滴。

  A3.1.2 用竹签挑取一小块粪便,在盐水中涂抹成一个直径为1cm粪便薄膜。其厚度以通过粪便薄膜 能看清书报上的字为宜。

  A3.1.3 盖上盖玻片后,显微镜下观察(天冷时注意玻片保温)。

  A3.2 碘液玻片法涂片制法同A3.1,仅用碘液代替生理盐水而制涂片。包囊呈棕色,未成熟包囊的糖原泡呈棕色,核与囊壁不着色而透明。

  A3.3 铁苏木素染色法

  A3.3.1 用新鲜粪便于载物玻片上制成薄膜。

  A3.3.2 立刻放入热至40℃邵氏固定液中,约3~5min.固定液温度低于40℃时需15~30min。

  A3.3.3 再放入70%酒精中5~10min,然后移至70%碘酒精脱汞10min以上,使涂片变为棕色。

  A3.3.4 放入70%酒精中1h或过夜,再放入50%酒精中5min。

  A3.3.5 用流水轻轻冲洗10min,再用蒸馏水冲洗。

  A3.3.6 放入热至40℃20g/L的铁明矾溶液中媒染2min或40g/L的铁明矾溶液中1~6h,自来水冲洗5min。

  A3.3.7 移入5g/L的苏木素染色液中1至数小时或过夜,自来水冲洗5min。

  A3.3.8 再放入20g/L的铁明矾溶液中20min,至颜色适当,细胞核清晰可见为止,再以流水冲洗5min。

  A3.3.9 依次放入50%、70%、80%、90%、95%、100%酒精中各2~10min。

  A3.3.10 放入二甲苯和纯酒精各半的溶液中及纯二甲苯中各约2min,以透明之。

  A3.3.11 用中性树胶封片、干燥、镜检。

  A3.4 染色结果

  滋养体的核膜呈深蓝黑色,核仁与核膜之间清晰,核膜内染色质粒分明,细胞质蓝色,食物泡内含物为深蓝色。包囊为蓝色,核与滋养体清晰可见。红细胞呈红色,拟染色体呈深蓝黑色,糖原泡在染色过程中被溶解成空泡。

  A3.5 培养检查法

  A3.5.1 采取粪便标本,务求新鲜,所用器皿清洁干净。尿液或水勿混入粪便或容器内。

  A3.5.2 标本采集,应选择脓血及粘液部分;比较正常的粪便,要采取不同部位。成形或半成形便应采取5~10g,放入便盒。液质或半液质粪便,可用小勺装入试管或标本瓶中。任何容器均应加盖,容器外面切勿沾染粪便。

  A3.5.3 粪便采集后,应立即送检,务必在2h内进行检查。

  A3.5.4 培养方法(多栖培养法)

  A3.5.5 成形或半成形便,用灭菌的接种环取豌豆大小,接种于培养基的液体部分,并在管壁上轻轻研磨,使粪便混匀于液内。

  A3.5.6 液质或半液质粪便则用灭菌吸管,吸取0.5mL粪液,接种培养基的液体部分中。

  A3.5.7 放入37℃温箱,培养48h,用吸管取沉淀物一滴,作涂布检查。方法见A3.1。

  A3.5.8 若检查结果为阴性,应从培养管底部吸取沉淀物0.5mL转种另一培养基中,再经48h培养后检查,仍为阴性,报告。

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